1、氨基修飾介孔二氧化硅(NH2-MSN)的制備
依據** Stober法制備MSN,在此基礎上,本實驗改良了** Stober 法,并一步合成NH2-MSN :1.0 g CTAB溶解于480 mL超純水中,加入3.5 mL 2 mol.L-1NaOH 溶液,80℃恒溫攪拌2 h,然后快速加入3 mL TEOS,30 min后緩慢恒速滴入2mL APTES,控制5 min 滴畢,恒溫繼續反應2 h,反應結束后靜置熟化24 h, 15 000 r - min-1離心30min得到白色固體。將離心得到的白色固體分散于200 mL NH4NO3(10 mg .mL-')的乙醇溶液中80 ℃回流4 h,經過6次反復操作去除模板劑CTAB,最后一次離心后真空干燥,得到白色粉末NH,-MSN。采用透射電鏡(TEM)分別對MSN、NH2-MSN進行觀察,粒徑儀測定粒徑及Zeta 電位,傅立葉紅外光譜儀(FTIR)表征. NH2-MSN 上的修飾氨基。
2、NH2-MSN-RES的制備
本實驗設計了反復飽和溶液吸附法來制備NH2 -MSN-RES:稱取100 mg NH2-MSN(記為W10)分散到RES飽和乙醇溶液20 mL中,常溫25℃避光攪拌,每隔30 min短時超聲3 min,攪拌2h使 NH2-MSN充分吸附RES飽和乙醇溶液,然后15 000 r ·min-1離心30 min,將離心得到的白色固體35℃減壓干燥后稱重(記為W11)﹐然后重復分散、吸附﹑離心、干燥、稱重,每重復一次的稱重分別記為W12、W13、W14……。同樣,稱取100 mg NH2-MSN分散到乙醇溶液20 mL中,除了不加入RES 外,其他同法操作,每次稱重分別記為W01、W02 、 W03、 W04……,按照相同的方法制備對照組MSN-RES。
3、NH2-MSN-RES體外釋放度的測定
稱取RES、MSN-RES、NH2-MSN-RES適量(折合RES量10 mg)分散于10 mL的PBS(pH 7.4)緩沖液﹐置于透析袋(截留相對分子質量3500)中,透析夾密封后置于釋放介質PBS 中,體積為1000 mL,在37℃下以50 r min-1恒溫水浴振蕩,平行操作3份。分別于15、30、45、60 min、2、4、6、8、12、24、48 h取l mL透析介質,并補充相應的PBS。取出的透析介質用0.45 um微孔濾膜過濾,續濾液經 HPLC 測定RES濃度,計算累積釋藥百分率。
4、HPLC色譜條件
色譜柱:SunFire C18 (4.6 mm x 250 mm,5 um);流動相:甲醇水(50:50);柱溫:35℃;流速:1.0 mL·min-1 ;檢測波長:306 nm;進樣量:20 uL。以白藜蘆醇的峰面積為縱坐標(Y),其濃度為橫坐標(X)進行線性回歸,得回歸方程為:y=132 917X +776.27,r =0.999 9,表明RES在0.25 ~10 ug· mL-'內線性關系良好。考察其高、中、低3種濃度溶液的日內精密度RSD小于2%,日間精密度 RSD小于3%。
5、NH2-MSN 細胞毒性
取對數生長期Caco-2細胞接種于96孔平底細胞培養板中,密度為1 x105個·mL-1每孔加入190uL培養液培養12 h。然后實驗組分別加入不同溶度的MSN和NH2-MSN的混懸液10 uL,**質量濃度分別為0.01、0. 1、0.5、1、5、20、50、100 ug mL-1,空白對照組加入無菌生理鹽水,每組每濃度設6個平行孔。培養 24 h后,每孔加入 5 mg ·mL-1的MTT溶液10 uL,微量振蕩器上振蕩3 ~5min,繼續培養4 h,棄上清液,加入DMSO 150 uL,在微量振蕩器上振蕩10 min,用酶標儀測定570 nm波長處其光密度(A)值。取6個孔平均A值計算細胞的存活率(IC),IC=(實驗組A 值/空白對照組A值)×**。
6、NH2-MSN-RES跨膜轉運
參考文獻建立 Caco-2細胞單層模型。將造模成功的Transwell(美國Corning公司3402型,膜面積1.12 cm2,膜孔徑3 um)小室置于12孔嵌套板中,每板分為3 組 ( RES、MSN-RES、NH2-MSN-RES),平行6孔,每組考察含RES為2 ug ·mL-1 3種制劑的轉運情況。用預先37℃保溫的D-Hanks溶液沖洗3次,跨膜轉運AP側→BL側時,在 BL室加入1.5 mL空白D-Hanks溶液,使AP室外表面完全浸透,然后在AP室加入1.5 mL含藥培養基;跨膜轉運BL側→AP側時,在BL室中加入1.5 mL含藥培養基,AP室加入1.5 mL空白D-Hanks溶液。加入藥液后分別于0.5、1、2、4、8、12 h 時從BL或AP室小心取樣0.15 mL,并補充0.15 mL的空白D-Hanks。樣品經 HPLC測定**濃度,繪制**吸收曲線并計算表觀滲透系數Papp,Papp =△Q/(△t· A·P0),△Q為**的累積轉運量( ug) ;△Q/At為**轉運速率( ug min -1); po為**初始濃度(ug·mL-1) ;A為細胞單層的表面積(cm2)。
MSN憑借其巨大的比表面積可以**提高**的口服生物利用度,而經過氨基修飾的MSN通過與胃腸道表面黏蛋白的相互黏附,更加**促進了**的吸收。同樣,實驗結果表明MSN和NH2-MSN在較高濃度時具有一定的細胞毒性,一方面是由于其巨大的比表面積與細胞接觸時破壞細胞膜的穩定﹐另一方面可能由于制備時模板劑CTAB未能除盡而引起細胞毒性,前者在口服給藥中難以避免,因為降低了比表面積也會降低與胃腸道的接觸面積而降低吸收,后者可以在后續的研究中改進合成工藝來解決。
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